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  3. Piero nella foto del mio primo porcino hai scritto Luisa e Giovanni :194:

    Io mi chiamo sempre Giuliano. :194:

    Giuliano.

  4. Ciao Piero, non sapevo che Luisa mi tradisce con Giovanni.:194:

    Giuliano.

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  6. Saxifraga cuneifolia L. subsp. cuneifolia, Regione Liguria, 200 m s.l.m., Maggio 2020, foto di Marika.
  7. Saxifraga cuneifolia L. subsp. cuneifolia, Regione Liguria, 200 m s.l.m., Maggio 2020, foto di Marika.
  8. Saxifraga cuneifolia L. subsp. cuneifolia, Regione Liguria, 200 m s.l.m., Maggio 2020, foto di Marika.
  9. Agaricus freirei Blanco-Dios; Regione Lazio; Dicembre 2011; Foto e commento Felice Di Palma. Si riconosce dal simile Agaricus phaeolepidotus, molto vicino anche filogeneticamente, per la presenza di braccialetti di squame brune alla base del gambo, l'anello semplice e non a ruota dentata come in Agaricus phaeolepidotus, cheilocistidi mediamente più piccoli, crescita in aree dunali e in prossimità dei litorali, mentre Agaricus phaeolepidotus, ha un habitat prevalentemente ruderale associato a latifoglie, e comunque non necessariamente litoraneo. Le tipiche bande rettangolari marroni sulla faccia inferiore dell'anello e la loro formazione. Alla sezione, la carne alla base del gambo spesso non mostra viraggi molto evidenti, l'odore di inchiostro tipico della Sezione Xanthodermatei in questa specie è molto leggero e si avverte soprattutto alla base del gambo. Le spore sono relativamente piccole. (4,7)4,80-5,66 × (3,23)3,30-3,84(3,93) µm. I cheilocistidi come un po' in tutto il genere Agaricus, devono essere ricercati con attenzione se non si vuole ottenere il risultato della foto seguente, cioè un "inquinamento" da basidioli. Per osservare i cheilocistidi bisogna inizialmente schiacciare pochissimo il coprivetrino, per individuare esattamente dove sono posizionati. Una volta individuati i cheilocistidi, si può schiacciare di più per cercare di farli uscire dalla trama lamellare, per una più evidente osservazione. Basidi tetrasporici.
  10. Agaricus essettei Bon; Regione Trentino; Settembre 2008; Foto di Pietro Curti.
  11. Pholiotina nemoralis (Harmaja) Bon; Regione Lombardia; Gera d'Adda, Maggio 2016. Foto e microscopia di Angelo Mariani. Spore 9,66-12,19 × 5,07-6,30 µm; lisce, a parete spessa con poro germinativo. Cheilocistidi polimorfi.
  12. Pholiota lubrica (Pers. : Fr.) Singer; Foto di Luca Mistè. Il bel colore rosso del cappello, la sua viscosità, le forti decorazioni sul gambo, aiutano la determinazione macroscopica sul campo.
  13. Tubaria hiemalis Romagn. ex Bon; Regione Lazio; Marzo 2020; Foto di Manuel Atzeni. Cheilocistidi. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Cheilocistidi. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Basidio. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Caulocute. Osservazione in Rosso Congo a 100×. Pileipellis. Osservazione in Rosso Congo a 200×. Pileipellis. Osservazione in Rosso Congo a 200×. Spore. Osservazione in Rosso Congo a 600×.
  14. Sarcoscypha coccinea (Gray) Boud.; Regione Lazio; Marzo 2020; Foto Manuel Atzeni. Confronto delle spore tra specie simili Tabella di confronto delle misure sporali Misure spore Misure aschi Esemplare esaminato (28) 28,6-31,8 (35,9) × (9,1) 9,3-11 (11,1) µm (400,6) 400,64-403,29 (403,3) × (11,7) 11,74-13,26 (13,3) µm Van Vooren (25) 27-36 × 10-12 µm 400-455 × 11-13 µm Medardi 30-40 × 14,5-15 µm 400 × 15 µm Breitenbach 29-39 × 9-11 (13) µm 400-450 × (11,5) 13,5-15 (17) µm Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 600×. Aschi e parafisi. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 200×. Asco e spore. Osservazione in Rosso Congo a 200×. Sezione. Osservazione in Rosso Congo a 40×. Parafisi. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Peli bordo apotecio. Osservazione in Rosso Congo a 200×.
  15. Setchelliogaster tenuipes (Quél.) J. Schröt.; Regione Lazio; Marzo 2020; Foto Manuel Atzeni. Cistidi. Osservazioni in Rosso Congo a 400×. Cistidi. Osservazioni in Rosso Congo a 400×. Cistidi. Osservazioni in Rosso Congo a 600×. Cistidi. Osservazioni in Rosso Congo a 600×. Spore. Osservazioni in Rosso Congo a 600×.
  16. Geopora sumneriana (Cooke) De La Torre; Regione Lazio; Marzo 2020; Foto Manuel Atzeni. Aschi e parfisi. Osservazioni in Rosso Congo a 200×. Aschi e parfisi. Osservazioni in Rosso Congo a 400×. Ascho e spore. Osservazioni in Rosso Congo a 600×. Ascho e spore. Osservazioni in Rosso Congo a 600×. Spore. Osservazioni in Rosso Congo a 400×. Peli excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Peli excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 200×. Peli excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 100×. Peli excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 100×.
  17. Exidia glandulosa (Bull. : Fr.) Fr. 1822; Regione Lazio; Marzo 2020, Foto di Tomaso Lezzi. Ritrovamento su ramo a terra di Robinia pseudoacacia.
  18. Agaricus sylvicola (Vittad.) Peck; Regione Marche; Settembre 2012; Foto di Pietro Curti.
  19. Agaricus arvensis Schaeff. : Fr.; Regione Campania; Novembre 2011; Foto e commento Felice Di Palma. I campioni rappresentati nelle foto successive, fino a qualche anno fa erano determinabili come Agaricus nivescens. Oggi la moderna micologia considera questa specie all'unanimità come un sinonimo non prioritario di Agaricus arvensis, nuovo nome con cui oggi deve essere chiamata. Reazione al KOH sulla cuticola. Esemplare maturo. Esemplare giovane. Anello con "ruota dentata". Spore= 5,7-6,7 × 4,0-4,9 µm; Q= 1,3-1,5. Elementi imeniali. Cheilocistidi: il filo lamellare ne è completamente tapezzato (come giustamente riportato in letteratura) tuttavia sono talmente infossati nella trama lamellare che la loro osservazione è oltremodo difficoltosa. In particolare occorre fare molta attenzione a non schiacciare troppo il preparato in quanto la presenza di un numero decisamente superiore di basidioli inquinerebbe irrimediabilmente l'osservazione. Solo dopo aver esattamente individuato la loro collocazione (anche a bassi ingrandimenti) è possibile, schiacciando ulteriormente, sperare di riuscire ad isolarne qualcuno per l'osservazione nella sua interezza. Regione Campania; Ottobre 2007; Foto e descrizione di Felice Di Palma. Spore: n=30 (5,59 )5,773-7,073(7,66)X(4,04 )4,19-5,003(5,16). Sul filo lamellare non sono riuscito a trovare cheilocistidi, ed in effetti i conti tornano, perché questa specie presenta cheilocistidi molto corti (molto infossati nella trama della lamella) quindi la loro osservazione è veramente complicata. Regione Campania; Dicembre 2013; Foto di Giulio Martino. Aspetti macro. basidioma di dimensioni medie 8cm di diametro cappello e stipite alto 9cm; pileo leggeremente forforaceo e fibrilloso di colore bianco e solo leggermente ingiallente, dopo 24h l'ingiallimento è ben visibile; stipite finemente pruinoso sotto l'anello, ingiallimento debole alla base; lamelle rosa carnicino nell'esemplare giovane, marroni nell'adulto; anello supero e dentato nella parte inferiore; carne bianca, debolmente ingiallente, quasi impercettibile, odore di mandorla ma leggerisssimo, sapore grato (forse fungino); habitat in aiuola sotto cipresso. Aspetti microscopici: spore ovoidali con guttule, misure 6,39x4,43µm; cheilocistidi sferoidali/piriformi fino a 15 µm; basidi bi e tetrasporici; trama lamellare del subimenio formata da ife subcilindriche ife irregolarmente allungate e settate; trama dell'anello formata da ife a salsicciotto talune allargate, settate con alcune ramificazioni o protuberanze. Spore. Basidi. Cheilocistidi. Imenio e subimenio. Trama anello. Regione Lombardia; Maggio 2014; Foto, descrizione e microscopia di Massimo Biraghi. Arcene, giardino privato, sotto Thuja orientalis pyramidalis aurea. Microscopia Spore. Long.: N = 40; dMd; (5,13)5,354-5,5675-6,337(6,81) Larg.: N = 40; dMd; (3,67)3,965-4,08-4,638(4,82) Q: N = 40; dMd; (1,20)1,241-1,31-1,528(1,58) V: N = 4 0; dM ; (37,2)44,98-49,7-68,24(73,9) N° Long. Larg. Q Moy 5,84 4,27 1,37 Min 5,13 3,67 1,20 Max 6,81 4,82 1,58 Med 5,86 4,28 1,38 Cheilocistidi.
  20. Agaricus iodosmus Heinem.; Regione Lazio, Roma; Ottobre 2005; Foto e commento di Tomaso Lezzi. Questo Agaricus cresceva su un marciapiede, sulla terra intorno a un albero di Robinia, in prossimità di primordi di Psathyrella candolleana. Base del gambo fortemente ingiallente, odore di fenolo, cappello coperto da squamette color seppia su fondo bianco a macchie grige. Lamelle del giovane chiare.
  21. Amanita muscaria (L. : Fr.) Lam.; Regione Trentino; Settembre 2019; Foto macro e microscopiche di Manuel Atzeni Velo generale. Osservazioni in Rosso Congo a 200×. Velo generale. Osservazioni in Rosso Congo a 200×. Velo generale. Osservazioni in Rosso Congo a 200×. Velo generale. Osservazioni in Rosso Congo a 400×. Basidi. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Basidi. Osservazione in Rosso Congo a 400×. Basidi. Osservazione in Rosso Congo a 400×.
  22. Hygrocybe quieta (Kühner) Singer 1951 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Hygrophoraceae Sinonimi Hygrophorus quietus Kühner 1947 Etimologia L'epiteto Hygrocybe deriva dal greco hygròs = umido, e kybe = testa; per il cappello spesso viscido L'epiteto quieta deriva dal latino quietus = calmo fermo e fa riferimento all'odore simile a quello di Lactarius quietus. Cappello Cappello da convesso a campanulato poi disteso ma evidenzia sempre un basso umbone schiacciato, la cuticola liscia, fibrillosa è igrofana, di tonalità variabile, su base gialla con sfumature aranciate e biancastre. Il margine si presenta spesso fessurato e di colore più carico rispetto al contesto, la cuticola è facilmente separabile e lascia intravedere la carne bianco giallastra. Imenoforo Lamelle adnate o decorrenti con dentino, spesse, rade , ventricose, con filo lamellare eroso, intercalate a lamellule di varie dimensioni, inizialmente bianco giallastre, assumono una tonalità arancio salmone con sfumature rosa con lo sviluppo. Gambo Irregolare cavo all'interno, a volte cilindrico e distorto più spesso compresso, concolore al cappello, percorso da fibrille longitudinali, biancastro alla base. Carne Poco consistente, fragile, di colore giallo, odore di cimice e sapore dolce. Habitat Gregario, rinvenuto in bosco di latifoglia. Commestibilità e Tossicità Non commestibile di scarso interesse alimentare. Specie simili Hygrocybe ceracea (Sowerby : Fr.) P. Kumm., è simile, ma presenta il cappello viscoso, giallo brillante, e lamelle da decorrenti a largamente adnate. Hygrocybe reidi Kühner, ha colori arancio rossi e odore di miele. Osservazioni Si determina con facilità sul campo, per la colorazione rosa aranciata delle lamelle, per il gambo irregolare, compresso e fibrilloso e per l'odore di cimice. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Giovanni Galeotti. Approvata e revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria; Dicembre 2015; Foto macroscopia di Giovanni Galeotti.
  23. Plectania rhytidia (Berk.) Nannf. & Korf 1957 Tassonomia Divisione Ascomycota Classe Pezizomycetes Ordine Pezizales Famiglia Sarcosomataceae Sinonimi Peziza rhytidia Berk 1855 Urnula rhytidia (Berk) Cooke 1889 Sarcosoma rhytidium (Berk) Le Gal 1953 Sarcosoma rhytidia (Berk) Le Gal 1953 Etimologia L'epiteto neolatino Plectania deriva dal sostantivo femminile greco πλεκτάνη [plektàne] = intreccio, attorcigliamento, groviglio. L'epiteto neolatino rhytidia deriva dal sostantivo femminile greco ῥυτίς [rytìs] = crespa, piega, ruga; per il bordo crenulato dell'ascoma. Ascoma Sotto forma di apotecio, da 0,5 a 2,5 cm di diametro, imenoforo grigio-nerastro, liscio, con bordo crenulato, superficie esterna con costolature verticali, ricoperta da una fine peluria. Carne Nerastra e ceracea. Habitat Su residui di legno o radichette di latifoglia, più frequente su Eucaliptus spp. Microscopia Spore (22,4) 23,3-25,2 (25,9) × (10) 10,6-11,6 (12) µm; Q = (2) 2,1-2,3 (2,4); N = 16; Me = 24,2 × 11 µm; Qm = 2,2, elissoidali, con delle striature trasversali, non facilmente visibili. Aschi (365,2) 365,21-459,7 × (13,4) 13,44-16,8 µm; Q = 22,5-34,2; N = 4; Me = 403,2 × 15,4 µm; Qm = 26.6, cilindrici, ottasporici, non amiloidi. Parafisi cilindriche, settate, spesso ramificate e biforcate all'apice. Excipulum medullare formato da una textura intricta di ife cilindriche, con presenza di contenuto giallastro. Excipulum ectale formato da una textura globulosa/angularis, si notano sia peli corti a parete spessa, che peli molto più lunghi con parete meno ispessita, entrambi a volte mostrano delle leggere incrostazioni. Commestibilità e Tossicità Non commestibile. Osservazioni Per osservare meglio le striature presenti nelle spore, è bene effetuare una sporata su vetrino e osservare a secco senza liquidi, per evidenziare le strutture. Specie simili Possiamo differenziare il Genere Plectania dal Genere Pseudoplectania dalla forma sporale, in Plectania troviamo spore elissoidali, mentre in Pseudoplectania le spore sono sferiche. Pseudoplectania nigrella (Pers. : Fr.) Fuckel; è legata a conifere, preferibilmente a Picea spp., e ha spore sferiche. Pseudoplectania melaena (Fr. : Fr.) Sacc.; è legata principalmente ad Abies spp., e ha spore sferiche. Pseudoplectania ericae Donadini; è di habitat mediterraneo legata ad Erica arborea, e ha spore sferiche. Plectania melastoma (Sowerby : Fr.) Fuckel; ha apoteci ricoperti esternamente da granuli incrostati di color arancio e spore leggermente più grandi. Bibliografia CARBONE, M., AGNELLO, C. & BAGLIVO, A., 2010. Appunti su Plectania rhytidia e studio del typus di Urnula platensis. Rivista di Micologia, 53 (2): 119-135. MEDARDI, G., 2006. Atlante fotografico degli Ascomiceti d'Italia. Trento: Ed. AMB. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Manuel Atzeni. Approvata e revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Lazio; Marzo 2020; Foto di Manuel Atzeni. Aschi e parafisi. Osservazione in Rosso Congo anionico a 400×. Asco. Osservazione in Rosso Congo anionico a 400×. Parafisi. Osservazione in Rosso Congo anionico a 400×. Parafisi. Osservazione in Blu di Toludina a 600×. Spore. Osservazione in acqua a 600×. Excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo ammoniacale a 400× Excipulum medullare. Osservazione in acqua a 200×. Peli dell'excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 100× . Peli dell'excipulum ectale. Osservazione in KOH al 30% a 400×. Peli dell'excipulum ectale. Osservazione in Rosso Congo a 400×.
  24. Coniophora puteana (Schumach. : Fr.) P. Karst. 1868 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Boletales Famiglia Coniophoraceae Sinonimi Thelephora puteana Schumach. : Fr. 1803 Etimologia L'epiteto Coniophora deriva dalle parole greche [κονία] konía = polvere, sabbia e [φέρω] fero = io porto; per l’aspetto arenoso e inconsistente dei funghi appartenenti a questo genere. L'epiteto puteana deriva dal latino pŭtĕus = pozzo, buca fossa; per l'ambiente di crescita della specie, particolarmente umido e ombroso. Carpoforo Fungo corticolo, resupinato, adnato, membranoso, ben fissato al substrato ma facilmente separabile dallo stesso. Prima orbicolare, poi confluente in placche larghe da pochi centimetri fino a vari decimetri; il colore è inizialmente crema-giallino poi bruno-verdastro, olivastro, soprattutto nella parte centrale, con il margine che tende a rimanere di colore giallo o comunque più chiaro; margine fibrilloso di norma biancastro o raramente lievemente giallo. Carne inconsistente, alta solo 1 o 2 mm, prima molle e poi fibrosa. Microscopia Sistema ifale monomitico con ife settate, senza GAF, più o meno ramificate, ialine, a parete sottile, larghe 3-8 µm, di cui alcune raggiungono anche i 15 µm; sono presenti anche ife incrostate e rari GAF verticillati nelle ife basali. Basidi lunghi fino a 100 µm, subcilindrici-clavati, con restringimento nella parte mediana e senza GAF alla base. Spore 10,3-12 × 6,7-8,4 µm; Qm = 1,5; da ovoidi ad ellissoidali, a parete spessa con evidente apicolo, brunastre in acqua e con leggera reazione destrinoide. Habitat Vegeta sia su legno marcescente di aghifoglia che di latifoglia. È stato rinvenuto su legno di Castagno, Olmo, Faggio, Frassino, Betulla, Leccio, Tasso, Pino e Ginepro. Commestibilità e tossicità Non commestibile. Specie simili Coniophora arida (Fr. : Fr.) P. Karst., le è molto simile, dalla carne più sottile, dalle tonalità tendenzialmente più spente, ocracee, ma di fatto indistinguibile da un punto di vista macroscopico da Coniophora puteana per via della enorme variabilità cromatica delle due specie. La microscopia è quasi sovrapponibile: la prima ha mediamente spore leggermente più piccole della seconda, ma anche in questo caso la elevata variabilità delle misure sporali delle due specie fa diventare questo dato poco significativo. Le due specie però si riescono a separare grazie all’esame delle spore in acqua ove Coniophora arida ha spore gialline mentre Coniophora puteana ha spore brunastre. Inoltre Coniophora arida ha spore di norma fortemente destrinoidi mentre Coniophora puteana ha anch’essa una reazione destrinoide ma meno evidente della sua simile. Coniophora fusispora (Cooke & Ellis) Cooke si differenzia per le spore più lunghe e di forma affusolata. Coniophora olivacea (Fr. : Fr.) P. Karst. si distingue per la presenza di grossi cistidi cilindrici settati, a parete spessa e generalmente incrostati. Osservazioni Corticolo comune e diffuso in tutta Europa. Cresce su legni marcescenti in condizioni di particolare umidità. Un buon indizio per il suo riconoscimento è il colore verde-olivastro della parte centrale dell'imenoforo che contrasta con il margine giallastro. Per la conferma della determinazione è sempre necessaria una verifica microscopica. Note nomenclaturali La prima descrizione della specie risale al 1803 quando il botanico danese Heinrich Christian Friedrich Schumacher chiamò il fungo Thelephora puteana; in seguito nel 1868 Peter Adolf Karsten ricombinò la specie nel genere Coniophora attualmente prioritario. Nel corso degli anni sono state innumerevoli le descrizioni di specie corticole ricondotte poi a sinonimi di Coniophora puteana. Bibliografia BREITENBACH, J. & KRANZLIN, F., 1986. Champignons de Suisse. Vol. 2. Champignos sans lames. Lucerna. Ed. Verlag Mykologia. BERNICCHIA, A. & GORJON, S.P., 2010. Corticiaceae s.l. Fungi Europæi. Vol 12. Alassio (SV): Ed. Candusso. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Stefano Rocchi. Approvata e revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria, Isola Polvese di Castiglion del Lago (PG); Novembre 2018; Foto e microscopia di Stefano Rocchi. I Comitato scientifico del Circolo Micologico Naturalistico Perugino sull'isola Polvese presso il Centro cambiamento climatico e biodiversità in ambienti lacustri ed aree umide di Arpa Umbria. Esemplari rivenuti su legno di Leccio a terra. (Exsiccatum SR20181110-04) Sistema ifale monomitico con ife settate, senza GAF, più o meno ramificate, ialine, a parete sottile, larghe 3-8 µm, di cui alcune raggiungono anche i 15 µm; sono presenti anche ife incrostate e rari GAF verticillati nelle ife basali. Osservazione in Rosso Congo a 1000×. Basidi lunghi fino a 100 µm, subcilindrici-clavati, con restringimento nella parte mediana e senza GAF alla base. Osservazione in Rosso Congo a 1000×. Spore 10,3-12 × 6,7-8,4 µm; Qm = 1,5; da ovoidi ad ellissoidali, a parete spessa con evidente apicolo, brunastre in acqua. Osservazione in acqua a 1000×. Spore 10,3-12 × 6,7-8,4 µm; Qm = 1,5; da ovoidi ad ellissoidali, a parete spessa con evidente apicolo e con leggera reazione destrinoide. Osservazione in Melzer a 1000×.
  25. Stereum subtomentosum Pouzar; Regione Toscana; Dicembre 2018; Foto di Alessandro Francolini. Come il simile Stereum hirsutum si presenta più o meno a mensole flabelliformi, appressate e spesso confluenti o concresciute, nate su legno guasto di varie latifoglie. Caratteri macroscopici differenziali rispetto a Stereum hirsutum sono: la superficie sterile che appare vellutata-feltrata e non marcatamente irsuta, i colori da ocra a bruno-ruggine anche con toni rosso scuro, con margine ondulato-lobato e nettamente più chiaro, mentre in Stereum hirsutum i colori del cappello sono per lo più giallastri, arancioni o bruno chiaro; inoltre l’imenio di Stereum subtomentosum è liscio come in Stereum hirsutum ma ha colore grigio-giallastro e vira al giallo cromo se contuso o sfregato, mentre in Stereum hirsutum l’imenio ha colore più vivo, giallo-arancio, ed è immutabile al tocco o allo sfregamento. Imenoforo liscio, di colore grigio-giallastro, con alcune macchie di colore giallo cromo.
  26. Bisporella citrina (Batsch : Fr.) Korf & S.E. Carp.; Regione Toscana; Dicembre 2018; Foto di Alessandro Francolini. Ascomicete costituito da un minuscolo apotecio che può raggiungere il mezzo centimetro di diametro; sessile o peduncolato; può assumere forma da turbinata (a trottola) a discoide (appiattita) a leggermente depressa (cupulata). Colorazione da giallo vivo a giallo limone sia sulla superficie sterile che sull’imenoforo; peduncolo (quando presente) di colore biancastro all’attacco del substrato, via via più giallino salendo verso l’apice per sfumare e divenire concolore all’imenoforo. Carne di consistenza ceracea, giallina. Fruttifica su legno guasto di latifoglie, non sulla corteccia ma sulle parti decorticate.
  27. Gymnopus brassicolens (Romagn.) Antonín & Noordel; Regione Toscana; Dicembre 2018; Foto di Alessandro Francolini. Specie autunnale che cresce in gruppi o in cespi su vari residui legnosi sia di latifoglie che di aghifoglie. Caratteristico è il suo odore sgradevole che può ricordare quello del cavolo marcio o dell’aglio ammuffito. Presenta cappello da convesso a piano, a maturità talvolta un poco depresso, di colore bruno-rossastro, più chiaro all’orlo che è un poco striato; margine irregolare. Lamelle più o meno smarginate al gambo, biancastre, più scure a maturità. Il gambo è sottile e slanciato, di colore da nero a nero-brunastro, meno scuro all’apice. Gli è simile Gymnopus foetidus con odore analogo ma con cappello nettamente solcato-scanalato anche fino al margine, depresso e talvolta anche ombelicato; inoltre la lamelle di Gymnopus foetidus sono più fitte, adnate, assai intervenose, e di colore rosato, più scure a maturità. La crescita, inoltre, è preferenziale su fogliame o residui legnosi per Gymnopus brassicolens mentre Gymnopus foetidum ama fruttificare su rami o rametti marcescenti a terra. Microscopicamente Gymnopus foetidum presenta spore decisamente più grandi. Nati su lettiera di aghi di Pino nero, misto a varie latifoglie.
  28. Pleurotus ostreatus (Jacquin : Fr.) Kummer; Regione Toscana; Dicembre 2018; Foto di Alessandro Francolini. Dal (nuovo) Tutto Funghi, Scheda 42, Pag. 146: “Cresce cespitoso sui tronchi vivi, sui rami caduti e sui ceppi di alberi di latifoglie, in particolare di Pioppo, Salice, Sughera. Il suo periodo di crescita va dall’inizio dell’autunno a tutto l’inverno; una delle sue caratteristiche, infatti, è quella di resistere alle gelate invernali. Ha carne compatta, soda, tenace nel gambo; elastica quasi fibrosa nel cappello dove assume vari spessori: più spessa vicino al gambo, sempre più sottile verso il margine; odore lieve, a maturità con lieve sentore di muffa, sapore dolce.” Nati su un vecchio ceppo muschioso di Cerro.
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