Archivio Micologico

Phylloporus rhodoxanthus (Schw. : Fr.) Bresadola; Regione Lombardia, Valle Camonica; Luglio 2011; Foto di Lorenzo Martinelli.

Phylloporus rhodoxanthus (Schw. : Fr.) Bresadola; Regione Trentino, Carano; Luglio 2008; Foto di Franco Sotgiu.

Phylloporus rhodoxanthus (Schw. : Fr.) Bresadola; Regione Lazio; Settembre 2006; Foto di Mauro Cittadini. Particolare sulle anastomosi e setti trasversali sulle lamelle. Una foto delle spore: ellittico-fusiformi (9,5)10-13 × 4-4,5 µm, per chi ha un po' di esperienza con le spore degli Xerocomus non sfuggirà la somiglianza.

Phylloporus rhodoxanthus (Schw. : Fr.) Bresadola; Regione Lombardia, Val Brembana, loc. Camerata Cornello; Settembre 2005; Foto di Massimo Biraghi.

Phylloporus rhodoxanthus (Schw. : Fr.) Bres. 1900 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Boletales Famiglia Boletaceae Foto e Descrizioni Probabilmente commestibile ma da risparmiare per la rarità e bellezza. Visto da sopra lo potremmo scambiare per uno "dei tanti" piccoliXerocomus, ma una volta rigirato notiamo subito un imenoforo molto particolare formato da lamelle larghe, irregolari, con molte anastomosi e setti trasversali, tanto che molti definiscono questo tipo di imenoforo come a "pori lamelliformi". Si tratta di Phylloporus rhodoxanthus, una interessante Boletacea considerata come "anello di congiunzione" tra i funghi a lamelle e quelli a pori e tubuli. La vicinanza, in particolare, con il genere Xerocomus è evidente anche quando si vanno ad analizzare spore e cuticola. Il fungo in oggetto puo essere definito poco o mediamente carnoso. Phylloporus rhodoxanthus è una specie decisamente poco comune; è presente all'incirca sull'intero territorio nazionale (dalla Sicilia alle Alpi); è possibile rintracciarlo sia sotto conifere (Picea abies) che sotto latifoglie (Faggio, Quercia, Castagno e Nocciolo) la sua fruttificazione è tipicamente da "esemplare isolato". Vista ormai la sua estrema vicinanza "filogenetica" con Xerocomus in futuro la letteratura e probabile che si orienterà in tal senso. Regione Lazio, località Monti Simbruini, Campaegli; Anno 2004; Foto e commento di Mauro Cittadini. Una foto del luogo di raccolta, immense faggette a circa 1500 m s.l.m., pascolo con Gentiana lutea, in primo piano sullo sfondo la faggeta. Visto da sopra lo potremmo scambiare per uno "dei tanti" piccoli Xerocomus. Una volta rigirato notiamo subito un imenoforo molto particolare, formato da lamelle larghe, irregolari, con molte anastomosi e setti trasversali.

Pholiotina dasypus (Romagn.) P.-A. Moreau 2005 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Bolbitiaceae Sinonimi Pholiotina subnuda (Kühner ex Kühner & Watling) Bon 1991 Microscopia Spore: (8,5)9-10,5 x (4,5)4,8-5,5 ellissoidi, in alcune proiezioni subamigdaliformi, apparentemente lisce ma fuochettando con attenzione risultano finemente punteggiate; bruno tabacco in acqua e KOH, poro germinativo assente o appena percepibile come assottigliamento della parete sporale. Basidi clavati, banali tetrasporici in maggioranza, ma presenti bisporici. Cheilocistidi numerosi, cilindrico-clavati, subcapitulati, utriformi, alcuni con apice irregolare lobato. Caulocistidi simili ai cheilocistidi, alcuni molto irregolati sotto forma di escrescenze e capitulati. Epicute: imeniderma formato da elementi piriformi, sferopeduncolati. GAF presenti soprattutto nella caulocute. Note La presenza del velo è estremamente fugace e rilevabile solo nei giovanissimi basidiomi. L'assenza di cistidi lecitiformi con collo sottile e capitulo decisamente più largo è differenziale dal GenereConocybe Fayod (Fungi Europaei, Volume 11: Conocybe and Pholiotina, A Hausknecht.) mentre per altri autori il taxon in oggetto andrebbe iquadrato comunque in Conocybe (Conocybe utriformis P.D. Orton) Regione Lazio; Novembre 2011; Foto di Mauro Cittadini. Foto di Tomaso Lezzi. Foto di Mauro Cittadini. Basidiospore. Basidiospore e caulocistidi. Cheilocistidi. Basidi e spore. Epicute. Caulocute con caulocistidi

Pholiotina nemoralis (Harmaja) Bon 1991 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Bolbitiaceae Sinonimi Conocybe dentatomarginata Watling 1980 Pholiotina dentatomarginata (Watling) Enderle 1986 Conocybe nemoralis Harmaja 1979 Foto e Descrizioni Cappello largo 13-30 mm, striato, igrofano, con velo fugace al margine. Lamelle adnate. Gambo 45 × 4 mm, fibrilloso. Microscopia Pileipellis a imeniderma formato da elementi 20-47 × 11-22 µm, piriformi, sferopeduncolati. Cheilocistidi 30-60 × 7-10 µm, in maggioranza lageniformi con lungo collo ed apice frequentemente capitulato. Caulocistidi simili ai cheilocistidi. Giunti a fibbia presenti. Spore 10-11,6 × 5-5,5 µm, ellissoidali, lisce, con poro germinativo e parete un poco inspessita. Osservazioni Questa Pholiotina appartiene alla sezione Vestitae del genere Pholiotina, che comprende specie con velo presente sotto forma di fiocchi al margine del cappello, mai come anello, cheilocistidi più o meno lecitiformi o tibiiformi e spore lisce. All’interno della sezione la specie si caratterizza per le spore ≥ 9 µm di lunghezza, con evidente poro germinativo, e per i cheilocistidi lageniformi con lungo collo ad apice parzialmente capitulato. Pholiotina exannulata var. maculata ha il cappello non striato e spore più piccole, Pholiotina velata ha anch’essa spore più piccole, e con parete più sottile. Regione Lombardia, Pianura bergamasca; località Gera d'Adda; Dicembre 2014; Foto, commenti e microscopia di Sergio Mombrini. Foto in habitat. Bosco di latifoglie in zona ruderale. Microscopia Pileipellis. Filo lamellare. Cheilocistidi. Caulocistidi. Spore in KOH. Spore. Osservazione in Rosso Congo a 100×.

Pholiotina arrhenii (Fr.) Singer; Regione Lombardia; Dicembre 2014; Foto di Massimo Biraghi.

Pholiotina arrhenii (Fr.) Singer; Regione Lazio; Dicembre 2006; Foto di Felice Di Palma.

Pholiotina arrhenii (Fr.) Singer 1973 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Bolbitiaceae Sinonimi Conocybe arrhenii (Fr.) Kits van Wav. 1970 Note tassonomiche Come segnalato da Tóth et al. (2013) e evidenziato nell'albero filogenetico presentato nel loro articolo, nel genere Conocybe si possono ricoscere 6 cladi, e nel genere Pholiotina 3 cladi, tra i quali è intercalato il clade dei Bolbitius. Si attendono nuovi studi più approfonditi che facciano maggiore chiarezza su come verranno considerate prossimamente le specie che per ora sono ancora riunite sotto i due generi Conocybe e Pholiotina. Etimologia L'epiteto Pholiotina è un termine composto dal nome di genere Pholiota e dal suffisso -ina = piccolo, per il suo aspetto simile a una piccola Pholiota. L'epiteto arrhenii è dedicato al micologo e lichenologo svedese Johan Peter Arrhenius. Cappello Pileo di 10-40 mm, conico campanulato, di color ocraceo, bruno aranciato al disco, con evidente umbone ottuso, leggermente igrofano e striato al margine, che risulta leggermente eccedente per la presenza di residui velari. Lamelle Imenoforo a lamelle ventricose, di colore ocraceo, con filo lamellare, finemente seghettato, discolore, sterile, ricco di cheilocistidi. Anello Anello membranoso, persistente, mobile sul gambo, striato nella parte superiore. Gambo Stipite 40-60 x 2-3 mm, cilindrico, fistoloso, all'inserzione con l'imenoforo presenta granuli e fiocchi farinosi, leggermente clavato alla base, dove si evidenziano macchie bruno ruggine. Carne Giallastra, priva di odore e sapore particolari. Habitat Fungo saprotrofo, terricolo. Microscopia Cheilocistidi 24,8-41,6 × (3,5) 3,53-6,2 µm; Q = (4,3) 4,31-9,87 (9,9); N = 5; Media = 31,1 × 4,6 µm; Qm = 7,0; allungati, cilindrici, sinuosi e strettamente lageniformi, con apice arrotondato. Pleurocistidi non osservati. Giunti a fibbia presenti in tutti i tessuti. Pileipellis (14,8) 15,5-18,9 (19,3) × (9,0) 9,3-12,2 (15,2) µm; Q = (1,1) 1,2-2,09 (2,1); N = 11; Media = 17,3 × 11,1 µm; Qm = 1,6; costituita da cellule subglobose e piriformi. Basidi clavati, in maggioranza tetrasporici. Spore (7,4) 7,6-8,5 (8,8) × (3,6) 4,1-4,6 (4,6) µm; Q = (1,7) 1,7-2,0 (2,1); N = 45; Media = 8,0 × 4,3 µm; Qm = 1,9; amigdaliformi in vista laterale, ellissoidali in vista frontale, appiattite in corrispondenza del poro germinativo, lisce, di colore ocra chiaro, mono- e pluri-guttulate, con un piccolo apicolo e poro germinativo di 0,9-1,3 µm di lunghezza. Stipitipellis costituita da cellule parallele, cilindriche settate. Caulocistidi langeniformi, cilindracei, sinuosi i simili ai cheilocistidi, con setti che evidenziano GAF. Commestibilità e tossicità Non commestibile. Specie simili Conocybe arrheni morfologicamente, potrebbe essere confusa con altre specie del genere Conocybe con anello vistoso. Solo una verifica dei caratteri microscopici, permette una corretta determinazione. Conocybe peronata Kühner & Watling = Pholiotina peronata Kühner & Maire ex Singer, ha un anello non completamente formato e indistinto, che rimane spesso sotto forma di tracce nella parte bassa del gambo. Pholiotina teneroides (J.E. Lange) Singer = Conocybe teneroides (J.E. Lange) Kühner, ha anello ben formato, ma ha spore in media di 10,8-12,6 µm di lunghezza. Conocybe blattaria (Fr.) Kühner = Pholiotina blattaria (Fr.) Fayod, ha anello ben formato, ma ha spore in media di 10,8-12,6 µm di lunghezza. Conocybe filaris (Fr.) Kühner = Pholiotina filaris (Fr.) Singer , ha anello ben formato, ma ha spore in media di 10,8-12,6 µm di lunghezza, cheilocistidi subclavati, lageniformi, mai capitati o subcapitati, poro germinativo di 1-1,5 µm di larghezza. Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon = Conocybe aporos Kits van Wav., specie tipica primaverile, ha gambo scuro, anello ben formato, poro germinativo assente, cheilocistidi capitulati. Pholiotina vexans (P.D. Orton) Bon = Conocybe vexans P.D. Orton, ha anello ben formato, ma spore di lunghezza media maggiore di 10,5 µm. Pholiotina utricystidiata Enderle & H.-J. Hübner = Conocybe utricystidiata (Enderle & H.-J. Hübner) Somhorst, ha anello ben formato, ma cheilocistidi utriformi. Pholiotina rugosa (Peck) Watling = Pholiotina rugosa (Peck) Singer, ha gambo scuro, anello ben formato, spore a parete spessa, poro germinativo più largo, di 1-1,5 µm di larghezza. Bibliografia AA.VV., 2012. Funga Nordica. Agaricoid, boletoid and cyphelloid genera. Ed. Nordsvamp. HAUSKNECHT, A., 2009. Conocybe and Pholiotina. Fungi Europaei, Vol 11. Ed Candusso. TÓTH, A., HAUSKNECHT, A., KRISAI-GREILHUBER, I., PAPP, T., VÁGVÖLGYI, C. & LÁSZLÓ G.N., 2013. Iteratively Refined Guide Trees Help Improving Alignment and Phylogenetic Inference in the Mushroom Family Bolbitiaceae. PLoS ONE 8(2): e56143. DOI:10.1371/journal.pone.0056143. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Giovanni Galeotti e Tomaso Lezzi - Approvata e Revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria; Dicembre 2021; Foto e microscopia di Giovanni Galeotti. (Exsiccatum GG211229-01) Imenoforo a lamelle ventricose, con filo lamellare finemente seghettato e sterile ricco di cheilocistidi, nella parte alta dello stipite si notano, residui fioccosi e farinose che evidenziano anche in micro, la presenza di abbondanti caulocistidi. Stipite allungato, leggermente clavato alla base, dove si evidenziano macchie bruno ruggine. Pileo igrofano, ocraceo, con largo umbone che assume tonalità aranciate, il margine è striato e presenta un filo biancastro dovuto ai residui velari. Anello membranoso molto evidente, mobile, striato nella parte superiore. Basidi clavati tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Caulocistiti. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Caulocistiti con GAF. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Pileipellis a cellule globose e piriformi. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Spore ellissoidali con apicolo evidente e piccolo poro germinativo. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Spore (7,4) 7,6-8,5 (8,8) × (3,6) 4,1-4,58 (4,6) µm; Q = (1,7) 1,73-2,0 (2,1); N = 45; Media = 8,0 × 4,3 µm; Qm = 1,9; Osservazione in rosso Congo, a 1000×.

Pholiotina velata (Velen.) Hauskn.; Regione Lombardia; Novembre 2006; Foto di Massimo Biraghi. Dentellature del velo ben sviluppate.

Pholiotina velata (Velen.) Hauskn. 1999 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Bolbitiaceae Sinonimi Conocybe appendiculata Watling 1971 Foto e Descrizioni Cappello ocra-miele, ocra-giallastro, si riconosce macroscopicamente per le dentature del velo abbastanza sviluppate e persistenti. Cresce nei luoghi erbosi, al margine dei sentieri, nelle tagliate. Spore con poro germinativo 7-8 × 4-5 micron. Secondo alcuni Autori esisterebbe una forma " macrospora " 10-13 × 6-7 micron. Regione Lombardia; Novembre 2016; Foto e commento di Massimo Biraghi.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; Svizzera; Maggio 2015; Foto e microscopia di Roberto Cagnoli. Tra fogliame e detriti legnosi in un ontaneto. Dimensioni 2,5-3,5 cm. Spore 7-9 × 4,5-5,5 µm prive di poro germinativo.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon, Regione Lazio, Roma, Villa Pamphilil; Novembre 2011; Foto di Mauro Cittadini Foto di Tomaso Lezzi. Un particolare del gambo con l'anello. Un particolare del cappello, con il bordo rigato. Microscopia. Foto di Mauro Cittadini. Spore 6-8(9) x 4-5 µm, ellissoidali, lisce, prive di poro germinativo, bruno tabacco chiaro in acqua. Basidi sia tetrasporici che bisporici, clavato-cilindrici, Cheilocistidi cilindrici, cildrico-flessuosi, sublageniformi, con testa ingrossata. Basidiospore. Cheilocistidi.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; RegioneLombardia; Maggio 2009; Foto di Massimo Mantovani. Foto di Federico Calledda.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; Regione Umbria; Aprile 2009; Foto di Tomaso Lezzi. Habitat: Biancospino, Acero, Carpino, e altre latifoglie, terreno argilloso. Cappello liscio senza rigature, anello evidente (nel suo piccolo), lamelle decisamente ascendenti, filo della lamella sterile (bianco), sporata ocra-ruggine. Le lamelle decisamente ascendenti e il colore della sporata fanno escludere il Genere Agrocybe e ci permettono di riconoscere il Genere Pholiotina. Velo presente con anello sul gambo. L'unica Pholiotina con anello, ma senza poro germinativo èPholiotina aporos (aporos = senza poro). Con fiori di Ranunculus ficaria (pianta simbionte di Mitrophora semilibera, che infatti era presente in associazione). Spore, misure osservate: 6,5-9 × 3,8-5 µm; Q = 1,8 Spore con apicolo, che risulta sporgente; mentre il poro germinativo è assente e si troverebbe sul lato opposto all'apicolo e apparirebbe come un'interruzione del confine della spora.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; Regione Lombardia; Marzo 2008; Foto di Massimo Mantovani.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon, Regione Lombardia; Maggio 2007; Foto di Federico Calledda.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon, Regione Lombardia; Val Cava (BG); Aprile 2007; Foto di Massimo Biraghi. Struttura della pileipellis composta da elementi clavati.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; Regione Lombardia; Val Cava (BG); Aprile 2007; Foto di Massimo Biraghi. Le dimensioni sono piccole, cappello di 2-2,5 cm gambo di 3-4 cm, munito di anello abbastanza persistente, biancastro nella pagina inferiore, striato, bruno per la sporata in quella superiore, gambo che termina con un piccolo bulbo; lamelle adnate intercalate da lamellule. Luogo del ritrovamento: boschetto artificiale di Pino con presenza di giovani Frassini. Prealpi orobiche, 500 metri di altitudine.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon; Regione Lombardia; Val Cava (BG); Aprile 2007; Foto di Massimo Biraghi.

Pholiotina aporos (Kits van Wav.) Clémençon 1976 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Bolbitiaceae Sinonimi Conocybe aporos (Fr.) Kits van Wav. 1970 Etimologia L'epiteto Pholiotina è un termine composto dal nome di genere Pholiota e dal suffisso -ina = piccolo, per il suo aspetto simile a una piccola Pholiota. L'epiteto aporos deriva dal latino ed è formata dalla lettera a = priva di, che precede il termine, e dalla parola porus = passaggio, è riferita alle spore di questa specie, che sono prive di poro germinativo. Cappello 5-30 mm, di colore bruno aranciato, inizialmente emisferico, poi campanulato ed infine a maturità mammellonato, si decolora per assumere tonalità ocracee a partire dall'esterno, il margine è eccedente e a volte è leggermente striato. L'umbone molto evidente largo e schiacciato, conserva tonalità scure rispetto al resto della cuticola. Lamelle Imenoforo a lamelle ventricose, adnate e leggermente decorrenti per un dentino all'inserzione con lo stipite, di colore inizialmente biancastro, poi a maturità bruno ocraceo, con tagliente finemente eroso, discolore rispetto alle facce delle lamelle, per la presenza di cheilocistidi. Anello Membranoso, persistente, rigato in modo evidente sul lato superiore. Gambo 20-40 x 2-3 mm cilindrico, bruno ocraceo fistoloso, rivestito da pruina biancastra, evidente in particolare all'inserzione con l'imenoforo, ingrossato alla base a volte leggermente bulboso, imbrunente al tocco. Carne Biancastra ocracea, tenera sul pileo, fibrosa nello stipite, odore di geranio. Habitat Fungo saprotrofo, prevelentemente primaverile, fruttifica su detriti organici. Microscopia Cheilocistidi cilindrici, sinuosi capitulati e subcapitulati, con apice arrotondato. Pleurocistidi non osservati. GAF abbondanti sui setti delle ife del gambo. Pileipellis costituita da cellule subglobose e piriformi. Basidi clavati, bisporici e tetrasporici, contenenti guttule sferiche. Spore(5,1) 6,0-7,6 (8,3) × (3,3) 3,7-4,5 (4,9) µm; Q = (1,3) 1,5-1,8 (1,9); N = 50; Media = 6,8 × 4,1 µm; Qm = 1,6; amigdaliformi in vista laterale, ellissoidali e ovoidali in vista frontale, prive di poro germinativo, lisce, di colore bruno ocraceo, pluriguttulate, con piccolo apicolo. Stipitipellis costituita da cellule parallele, cilindriche, settate. Caulocistidi cilindracei, sinuosi i simili ai cheilocistidi, molto numerosi, presenti a tratti, nella parte alta del gambo. Commestibilità e tossicità Non commestibile. Specie simili Pholiotina aporos morfologicamente, potrebbe essere confusa con altre specie del genere Pholiotina dotate di anello, da cui si differenzia per la crescita prevalentemente primaverile, per l'anello rigato e, a livello microscopico, per la forma e dimensione delle spore prive di poro germinativo. Pholiotina aporos var. moseriana Hauskn. si distinguerebbe da Pholiotina aporos var. aporos (Kits van Wav.) Clémençon per il colore completamente bianco, le spore più chiare e l'assenza di GAF (HAUSKNECHT 2009). Non tutti gli autori concordano però per mantenere separate questa due varietà. Pholiotina arrhenii (Kits van Wav.) Clémençon = Conocybe arrhenii Kits van Wav., presenta spore più grandi e con evidente poro germinativo, si diversifica anche per il periodo di crescita invernale. Pholiotina vexans (P.D. Orton) Bon = Conocybe vexans P.D. Orton, ha anello ben formato, spore di lunghezza media maggiore di 10,5 µm. Pholiotina rugosa (Peck) Watling = Pholiotina rugosa (Peck) Singer, ha gambo scuro, anello ben formato, spore a parete spessa, poro germinativo. Pholiotina hadrocystis (Kits van Wav.) Courtec., ha cheilocistidi di profilo più variabile e poro germinativo piccolo, ma distinto. Pholiotina teneroides (J.E. Lange) Singer, differisce per avere basidi bisporici e spore più larghe e a parete spessa. Pholiotina vestita (Fr.) Singer, manca dell'anello e ha cheilocistidi mai capitati. Bibliografia AA.VV., 2012. Funga Nordica. Agaricoid, boletoid and cyphelloid genera. Ed. Nordsvamp. HAUSKNECHT, A., 2009. Conocybe and Pholiotina. Fungi Europaei, Vol 11. Ed Candusso. TÓTH, A., HAUSKNECHT, A., KRISAI-GREILHUBER, I., PAPP, T., VÁGVÖLGYI, C. & LÁSZLÓ G.N., 2013. Iteratively Refined Guide Trees Help Improving Alignment and Phylogenetic Inference in the Mushroom Family Bolbitiaceae. PLoS ONE 8(2): e56143. DOI:10.1371/journal.pone.0056143. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Giovanni Galeotti - Approvata e Revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria; Aprile 2022; Foto e microscopia di Giovanni Galeotti. (Exsiccatum GG220410-01) Ritrovamento primaverile su detriti organici, in presenza di aghifoglia e latifoglia. Particolare dell'anello rigato aderente allo stipite. Cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400x Cheilocistidi sinuosi, generalmente capitulati. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. x Caulocistidi molto abbondanti, nella parte alta dello stipite, simili ai cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Caulocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Basidi in prevalenza tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Pileipellis. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Pileipellis. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Spore(5,1) 6,0-7,6 (8,3) × (3,3) 3,7-4,5 (4,9) µm; Q = (1,3) 1,5-1,8 (1,9); N = 50; Media = 6,8 × 4,1 µm; Qm = 1,6; prive di poro germinativo Osservazione in acqua, a 1000×.

Pholiota squarrosa (Weigel: Fr.) P. Kumm.; Regione Trentino Alto Adige; Settembre 2013; Foto di Pietro Curti.

Pholiota squarrosa (Weigel: Fr.) P. Kumm.; Regione Trentino Alto Adige; Settembre 2013; Foto di Mario Iannotti.

Pholiota squarrosa (Weigel: Fr.) P. Kumm.; Regione Trentino; Settembre 2013; Foto di Tomaso Lezzi.