Archivio Micologico

Paxillus involutus (Batsch : Fr.) Fr.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Cantharellus cibarius Fr.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Tricholoma sulphureum (Bull. : Fr.) P. Kumm.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Russula pascua (F.H. Møller & Jul. Schäff.) Kühner; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Russula nana Killerm.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Lactarius dryadophilus Kühner; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Inosperma calamistratum (Fr.) Matheny & Esteve-Rav.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Cuphophyllus pratensis (Schaeff. : Fr.) Bon; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Hygrocybe conica (Schaeff. : Fr.) P. Kumm.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Bovista nigrescens Pers. : Pers.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Amanita nivalis Grev.; Regione Trentino-Alto Adige (Provincia Autonoma di Bolzano); Luglio 2022; Foto di Tomaso Lezzi.

Lactarius rufus (Scop. : Fr.) Fr.; Regione Trentino Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Cortinarius caperatus (Pers. : Fr.) Fr.; Regione Trentino Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Lycoperdon perlatum Pers. : Pers.; Regione Trentino-Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Tylopilus felleus (Bull. : Fr.) P. Karst.; Regione Trentino Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Hydnellum aurantiacum (Batsch : Fr.) P. Karst.; Regione Trentino Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Xeromphalina campanella (Batsch : Fr.) Kühner & Maire; Regione Trentino Alto Adige; Luglio 2022; Foto di Giovanni Galeotti.

Laccaria laccata (Scop. : Fr.) Cooke; Regione Marche; Novembre 2004; Foto di Pietro Curti. Imenoforo, gambo e pileo.

Squamanita schreieri Imbach; Regione Umbria; Settembre 2020; Foto di Tomaso Lezzi. (Exsiccatum TL200901-01) Specie parassita di Amanita strobiliformis Paulet ex Vittad. Il gambo termina con una estremità napiforme formata dall'unione dei tessuti della Squamanita parassita e dell’Amanita parassitata, che è stata definita nel tempo e da vari autori in modi differenti. La definizione più recente ed accreditata è mycocecidium (VIZZINI 2014), che in questa specie si presenta bianco, appuntito all'estremità e decorato da squame disposte in cercini soprattutto sulla parte più alta del mycocecidium. Nota Per maggiori dettagli riguardo a questo ritrovamento si può consultare il recente articolo in versione bilingue inglese e italiana: LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Description of two Italian records ofSquamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Descrizione di due ritrovamenti in Italia di Squamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. All'interno dell'articolo sono disponibili la descrizione dettagliata del ritrovamento, e una discussione più approfondita. Bibliografia LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Description of two Italian records ofSquamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Descrizione di due ritrovamenti in Italia di Squamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LIU, J.-W., GE, Z.-W., HORAK, E., VIZZINI, A., HALLING, R.E., PAN, C.-L. & YANG, Z.-L., 2021. Squamanitaceae and three new species of Squamanita parasitic on Amanita. IMA Fungus 12: 4. https://doi.org/10.1186/s43008-021-00057-z [Data di accesso: 29/01/2020]. SCHREIER, L., 1938 Tricholoma X. Schweizerischen Zeitschrift für Pilzkunde 7: 97-100. VIZZINI, A. & GIRLANDA, M., 1997. Squamanita umbonata (Sumst.) Bas, a mycoparasite of Inocybe oblectabilis (Britz.) Sacc. Allionia 35: 171-175. VIZZINI, A., 2014. Index Fungorum 166. La carne del mycocecidium si mostra più grigiastra che nel resto della sezione, perché è formata sia dai tessuti dell'Amanita strobiliformis parassitata, che da quelli della Squamanita schreieri che la sta parassitando.

Squamanita schreieri Imbach 1946 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Squamanitaceae Etimologia L'epiteto Squamanita deriva da la latino squama = squama e dal nome di genere Amanita (dal greco Ἀμανὶτης [Amanitos] = fungo del monte Amano, da Ἄμανος [Amanos] = Amano, catena di monti tra la Cilicia e la Siria, nella Turchia asiatica, dove questa specie sembra fosse abbondante in antichità) per l'aspetto simile ad una Amanita con il cappello squamoso. L'epiteto schreieri è dedicato al micologo Leo Schreier, che ne descrive un roitrovamento nella rivista Schweizerischen Zeitschrift für Pilzkunde 1938 7: 97-100. Cappello Cappello convesso, con basso umbone schiacciato, presenta squame appressate di color arancio ruggine, distribuite radialmente sul cappello che lasciano intravedere a zone la carne bianca sottocuticolare. Il margine risulta eccedente e appendicolato. Imenoforo Lamelle da adnate a uncinate, decorrenti per un dentino, fitte, basse bianche, invecchiando diventano ocracee e presentano filo irregolare ed eroso più chiaro rispetto alle facce, sono presenti lamellule di diversi ordini. Gambo Cilindrico, tozzo, biancastro, ornato da squame color arancio ruggine, con una zona subanulare. Termina con una estremità napiforme formata dall'unione dei tessuti della Squamanita parassita e dell’Amanita parassitata, che è stata definita nel tempo e da vari autori in modi differenti. La definizione più recente ed accreditata è mycocecidium (VIZZINI 2014), che in questa specie si presenta bianco, appuntito all'estremità e decorato da squame disposte in cercini soprattutto sulla parte più alta del mycocecidium. Carne Carne biancastra nella sezione dello stipite e del pileo, grigiastra nel bulbo. Odore pungente sgradevole, con sentore di pesce. Habitat Questa specie è parassita di Amanita strobiliformis (Paulet ex Vittad.) Bertill. ed è quindi legata agli ambienti di crescita di quest'ultima specie. Microscopia Pileipellis un trichioderma formato da ife che contengono un pigmento precipitato all’interno delle cellule, frammiste ad ife oleifere. Basidi tetrasporici, clavati. Spore (4,6) 4,8-6,5 (7,6) × (3,4) 3,7-4,8 (5,4) μm; Q = (1,0) 1,2-1,6 (1,7); N = 52; Media = 5,8 × 4,2 μm; Qm = 1,4; ellissoidali, guttulate, a parete sottile, lisce, inamiloidi, ortocromatiche, biancastre in massa. Clamidospore (8,7) 8,73-9,2 (9,3) × (8,4) 8,5-9,0 (9,1) μm; Q = (1,0) 1,01-1,06 (1,1); N = 12; Media = 9,0 × 8,8 μm; Qm = 1,0; globose, con superficie verrucosa, rare, osservate nei tessuti della pileipellis. Trama lamellare subparallela. Cistidi assenti. GAF abbondanti, presenti alla base dei basidi e negli altri tessuti. Commestibilità e tossicità Non commestibile. Specie simili Il genere Squamanita comprende 15 specie (http://www.indexfungorum.org) che parassitano almeno 7 generi diversi, non strettamente imparentati tra di loro: Amanita, Cystoderma, Galerina, Hebeloma, Inocybe, Kuehneromyces, Phaeolepiota e forse Mycena (Liu et al. 2021). Di queste 15 specie 3 sono state descritte abbastanza recentemente: S. mira, S. orientalis e S. sororcula (Liu et al. 2021). Le specie più simili a S. schreieri sono S. mira, S. orientalis e S. sororcula. S. schreieri si differenzia dalle altre Squamanita per i seguenti caratteri: S. granulifera Bas & Læssøe, S. contortipes (A.H. Sm. & D.E. Stuntz) Heinem. & Thoen e S. fimbriata Gulden, Bendiksen & Brandrud hanno spore amiloidi. S. squarrulosa G.S. Ridl. e S. mira J.W. Liu & Zhu L. Yang hanno la base del gambo che emerge da un mycocecidium simile a una volva. S. orientalis J.W. Liu & Zhu L. Yang, S. sororcula J.W. Liu & Zhu L. Yang, S. umbonata (Sumst.) Bas e S. citricolor Thoen hanno cistidi imeniali. S. pearsonii Bas, S. paradoxa (A.H. Sm. & Singer) Bas, S. umbilicata Harmaja, S. odorata (Cool) Imbach e S. basii Harmaja hanno diametro del cappello inferiore a 5 cm. Nota Per maggiori dettagli riguardo a questo ritrovamento si può consultare il recente articolo in versione bilingue inglese e italiana: LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Description of two Italian records ofSquamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Descrizione di due ritrovamenti in Italia di Squamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. All'interno dell'articolo sono disponibili la descrizione dettagliata del ritrovamento, e una discussione più approfondita. Bibliografia LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Description of two Italian records ofSquamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LEZZI, T. & GALEOTTI, G., 2022. Descrizione di due ritrovamenti in Italia di Squamanita schreieri. RMR, Boll. Amer 115, Anno XXXVIII, 2022 (1): 31-38. [Data di accesso: 10/01/2023]. LIU, J.-W., GE, Z.-W., HORAK, E., VIZZINI, A., HALLING, R.E., PAN, C.-L. & YANG, Z.-L., 2021. Squamanitaceae and three new species of Squamanita parasitic on Amanita. IMA Fungus 12: 4. https://doi.org/10.1186/s43008-021-00057-z [Data di accesso: 29/01/2020]. SCHREIER, L., 1938 Tricholoma X. Schweizerischen Zeitschrift für Pilzkunde 7: 97-100. VIZZINI, A. & GIRLANDA, M., 1997. Squamanita umbonata (Sumst.) Bas, a mycoparasite of Inocybe oblectabilis (Britz.) Sacc. Allionia 35: 171-175. VIZZINI, A., 2014. Index Fungorum 166. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Giovanni Galeotti e Tomaso Lezzi - Approvata e Revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria; Settembre 2020; Foto di Giovanni Galeotti. Ritrovamento effettuato in bosco misto: su terreno marnoso arenaceo: Quercus pubescens Willd., Quercus ilex L., Cedrus atlantica (Endl.) Manetti ex Carrière e Pinus nigra J.F. Arnold. Pochi giorni prima del ritrovamento, nonché durante i giorni del ritrovamento sono stati osservati nei pressi esemplari di Amanita strobiliformis che confermano l'ipotesi del parassitismo di Squamanita schreieri su Amanita strobiliformis. Trama lamellare. Osservazione in rosso Congo, a 100×. Trama lamellare. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Trama lamellare. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Trama lamellare. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Pileipellis. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Pileipellis. Osservazione in acqua, a 1000×. Pileipellis, ìfe oleifere della cuticola. Osservazione in acqua, a 1000×. Pileipellis, GAF. Osservazione in acqua, a 1000×. Clamidospore. Osservazione in acqua, a 400×. Clamidospore. Osservazione in acqua, a 1000×. Clamidospore. Osservazione in acqua, a 1000×. Basidi clavati tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Basidi clavati tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. . Ife del bulbo. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Ife del bulbo. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Ife del bulbo. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Spore(4,6) 4,8-6,5 (7,6) × (3,4) 3,7-4,8 (5,4) μm; Q = (1,0) 1,2-1,6 (1,7); N = 52; Media = 5,8 × 4,2 μm; Qm = 1,4. Osservazione in acqua, a 1000×. Spore.Osservazione in rosso Congo, a 1000×.

Inocybe tenebrosa Quél. 1885 Tassonomia Divisione Basidiomycota Classe Agaricomycetes Ordine Agaricales Famiglia Inocybaceae Genere Inocybe Sottogenere Inocybe Sezione Splendentes Sinonimi Inocybe atripes G.F. Atk. 1918 Etimologia L'epiteto Inocybe deriva dal greco ἴς/ἴνος [is/inos] = fibra e "κύβη" [cýbe] = testa, per il cappello spesso tomentoso o dissociato in fibre. L'epiteto tenebrosa deriva dal latino tenebrosus, a, um = tenebroso, per l'annerimento alla base del gambo. Cappello Cappello di dimensione fino a circa 4-5 cm, di forma non perfettamente circolare, irregolare, la superficie da giovane è liscia, finemente fibrillosa, poi dissociata in squame di colore ocra, marrone uniforme nei soggetti giovani, ma in vecchiaia assume colorazioni a chiazze più brune, con ciuffi di squamette più scuri su uno sfondo più chiaro, bordo del cappello più chiaro ad andamento lobato con cuticola eccedente. Imenoforo Lamelle smarginate, biancastre da giovani, poi ocra-olivastre, con più ordini di lamellule. Gambo Gambo cilindrico, a volte contorto, fibrilloso, pruinoso, con base più larga, dalla base fino al centro di colore bruno-nerastro, grigiastro con sfumature olivastre, e biancastro fino all’apice del gambo. Il colore nero antracite è sempre presente alla base del gambo, da questo carattere trae origina l'epiteto specifico, che contrasta in modo molto evidente con il bianco candido della parte superiore del gambo. Carne Bianca. Odore spermatico complesso, ma anche con nota di odore banana. Habitat Cresce in boschi misti, giardini, parchi pubblici, con alberi decidui, spesso sotto querce e lecci, su suolo calcareo, fungo simbionte, dall'inizio dell'estate al tardo autunno, in gruppi numerosi, gregario o anche con i gambi appressati. Microscopia Spore (7,9) 8,2-9,9 (10,1) × (5,1) 5,2-6,3 µm; Q = (1,3) 1,4-1,8 (1,9); Media = 9,1 × 5,7 µm; Qm = 1,6; subamigdaliformi, lisce, a volte con guttula centrale. Basidi clavati, tetrasporici. Cheilocistidi cilindrico-clavati, clavati, fusiformi, metuloidi (a parete spessa) e muricati (con cristalli all’apice), multisettati, osservati fino a 3 setti. In questi ultimi la parete assume in KOH 5% una evidente colorazione gialla, ad alta rifrangenza. Pleurocistidi simili ai cheilocistidi. Caulipellis formata da Ife parallele, prevalentemente cilindriche, con abbondanti giunti a fibbia. Caulocistidi presenti su tutto il gambo, di diversa morfologia, spesso riuniti a ciuffetti, nella parte alta e fino a metà gambo cilindrici e clavati, metuloidi (a parete spessa) e alcuni muricati (con cristalli all’apice), nel terzo inferiore a fino alla base del gambo cilindrico-clavati a parete sottile. GAF a medaglione presenti nelle ife della trama lamellare. Commestibilità e tossicità Si ritiene velenosa come tutte le Inocybe, con sindrome muscarinica. Per approfondimenti consulta la Pagina di Micotossicologia. Specie simili Inocybe brunneotomentosa Huijsman, è forse la specie più simile, avendo gambo e cistidi simili. Si differenzia per i cistidi più corti e per il gambo ricoperto solo da caulocistidi metuloidi localizzati esclusivamente nel primo terzo superiore. Bibliografia AA.VV., 2018. Funga Nordica. Agaricoid, boletoid and cyphelloid genera. Ed. Nordsvamp. 2nd Edition, 2nd printing. Scheda di proprietà AMINT realizzata da Mario Iannotti e Giovanni Galeotti - Approvata e Revisionata dal CLR Micologico di AMINT. Regione Umbria; Gennaio 2023; Foto e microscopia di Mario Iannotti. Ritrovamento effettuato in un parco pubblico nei pressi di Quercus ilex L. Spore (7,9) 8,2-9,9 (10,1) × (5,1) 5,2-6,3 µm; Q = (1,3) 1,4-1,8 (1,9); Media = 9,1 × 5,7 µm; Qm = 1,6, subamigdaliformi, lisce, a volte con guttula centrale. Osservazione in KOH 5%, a 1000×. Basidi clavati, tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Cheilocistidi cilindrico-clavati, clavati, fusiformi, metuloidi con cristalli all’apice, multisettati, osservati fino a 3 setti. In questi ultimi la parete assume in KOH 5% una evidente colorazione gialla, ad alta rifrangenza. Osservazione in KOH 5%, a 400×. Osservazione in KOH 5%, a 1000×. Pleurocistidi simili ai cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Caulocistidi presenti su tutto il gambo, di diversa morfologia, spesso riuniti a ciuffetti, nella parte alta e fino a metà gambo cilindrici e clavati, metuloidi (a parete spessa) e alcuni muricati (con cristalli all’apice), nel terzo inferiore a fino alla base del gambo cilindrico-clavati a parete sottile. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Terzo inferiore, caulocistidi cilindrico-clavati a parete sottile. Osservazione in rosso Congo, a 400×. GAF a medaglione nelle ife della lamella. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Regione Umbria; Gennaio 2023; Foto e microscopia di Giovanni Galeotti. Ritrovamento effettuato in un parco pubblico nei pressi di Quercus ilex L. Spore (7,4) 8,2-9,8 (10,5) × (0,9) 5,3-6,2 (6,5) µm; Q = (1,4) 1,5-1,8 (1,9); N = 48; Media = 9,2 × 5,7 µm; Qm = 1,6; Osservazione in acqua, a 1000×. Basidi clavati tetrasporici. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Cheilocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Osservazione in rosso Congo, a 1000×. Caulipellis formata da Ife parallele, prevalentemente cilindriche, con abbondanti giunti a fibbia. Osservazione in rosso Congo, a 400×. Caulocistidi. Osservazione in rosso Congo, a 400×.

Amanita excelsa var. spissa (Fr.) Neville & Poumarat; Regione Marche; Giugno 2022; Foto di Mario Iannotti.

Polyporus squamosus (Huds. : Fr.) Fr.; Regione Marche; Maggio 2022; Foto di Pietro Curti. Imenoforo e pileo. Imenoforo e pileo.

Calvatia utriformis (Bull. : Pers.) Jaap; Regione Marche, Monte Nerone; Maggio 2022; Foto di Mario Iannotti.

Suillellus luridus (Schaeff. : Fr.) Murrill; Regione Marche; Giugno 2022; Foto e commento di Mario Iannotti. Lo stesso esemplare con un imbrunimento evidente dopo essere stato manipolato. La "linea di Bataille", cioè una superficie rosso carnicino che si trova nella carne al di sopra dei tubuli.